Este tema es parte del Curso Fundamental de Posgrado: Análisis Estadístico en Ciencias Biológicas Utilizando R, semestre 2017-1, de la Universidad Nacional Autónoma de México, impartido entre Agosto-Diciembre 2016 en el Centro de Ciencias Genómicas. Para más información consultar la página del curso en: http://www.ccg.unam.mx/~vinuesa/R4biosciences/.
Una presentación web de este documento está disponible aquí: http://www.ccg.unam.mx/~vinuesa/R4biosciences/docs/Tema8_correlacion_presentacionR.html#
La parte teórica está basada en (Crawley 2015), (Everitt and Hothorn 2014) y (A. P. Field, Miles, and Field 2012).
Este documento está aún en construcción y es generado con R (R Core Team 2016), rstudio (RStudio Team 2016), knitr (Xie 2016), rmarkdown (Allaire et al. 2016), pandoc (MacFerlane 2016) y LaTeX.
La correlación es una medida de la relación (covariación) lineal entre dos variables cuantitativas contínuas (x, y). La manera más sencilla de saber si dos variables están correlacionadas es determinar si co-varían (varían conjuntamente). Es importante hacer notar que esta covariación no implica necesariamente causalidad, la correlación puede ser fortuita, como en el caso clásico de la correlación entre entre el número de venta de helados e incendios, debido al efecto de una tercera variable, la temperatura ambiental.
La correlación es en esencia una medida normalizada de asociación o covariación lineal entre dos variables. Esta medida o índice de correlación r puede variar entre -1 y +1, ambos extremos indicando correlaciones perfectas, negativa y positiva respectivamente. Un valor de r = 0 indica que no existe relación lineal entre las dos variables. Una correlación positiva indica que ambas variables varían en el mismo sentido. Una correlación negativa significa que ambas variables varían en sentidos opuestos. Lo interesante del índice de correlación es que r es en sí mismo una medida del tamaño del efecto, que suele interpretarse de la siguiente manera:
La siguiente figura muesta ejemplos de pares de variables con correlación positiva moderada, negativa fuerte, así como correlación despreciable. ¿Sabrías identificar cada caso? Estos son datos que provienen del set state.x77 del paquete datasets que viene con la instalación de base de R. Se trata de una matriz de 50 filas y 8 columnas con estadísticas para 50 estados de EU relativos al tamaño de la población, renta per cápita, % de analfabetismo, expectancia de vida, tasa de asesinato, % de graduados de preparatoria, número promedio de días con heladas y área del estado en millas cuadradas. Esta información la pueden ver con el comando help("state.x77").
Analizemos visualmente las relaciones entre un subconjunto de las variables de state.x77 para afianzar los conceptos clave. Nótese que en las Figs. C-D, además de los gráficos de dispersión (“scatterplots”), se muestra la recta de regresión correspondiente al ajuste de un modelo lineal a los datos, con el fin de visualizar mejor la desviación de los puntos con respecto al modelo lineal.
La correlación se define en términos de la varianza (s^2) de las variables x e y, así como de la covarianza cov de x,y. Es por tanto una medida de la variación conjunta de ambas variables (cov(x,y)).
La varianza de una muestra representa el promedio de la desviación de los datos con respecto a la media \displaystyle Varianza(s^2) = \frac{\sum(x_i-\bar{x})^2} {N-1} = \frac{\sum(x_i-\bar{x})(xi-\bar{x})} {N-1}\\
La covarianza entre dos variables x e y es una medida de la relación “promedio” éstas. Es la desviación promedio del producto cruzado entre ellas: \displaystyle cov(x,y) = \frac{\sum(x_i-\bar{x})(yi-\bar{y})} {N-1}\\
Veamos un ejemplo de dos variables que co-varían (respuesta ~ dosis en 5 pacientes), es decir, que están correlacionadas.
Los datos: dosis=(8,9,10,13,15); resp=(5,4,4,6,8);
\displaystyle cov(dosis,resp) = \frac{\sum(x_i-\bar{x})(yi-\bar{y})} {N-1} =\frac{(-0.4)(-3)+(-1.4)(-2)+(-1.4)(-1)+(0.6)(2)+(2.6)(4)}{4} = \frac{17}{4} = 4.25\\
Un valor de covarianza positivo indica que ambas variables se desvían de la media en la misma dirección, mientras que uno negativo indica que las desviaciones acontecen en sentidos opuestos.
# genermos los vectores dosis y resp
dosis <- c(5,4,4,6,8)
resp <- c(8,9,10,13,15)
# calculemos la dosis y respuesta medias
dosis.mean <- mean(dosis); resp.mean <- mean(resp);
cat("dosis media =", dosis.mean, "; resp.mean =", resp.mean)
## dosis media = 5.4 ; resp.mean = 11
# cálculo de las desviaciones de cada dosis y respuesa con respecto a sus
# valores promedio
dosis.dev <- dosis - mean(dosis); resp.dev <- resp - mean(resp);
cat("dosis.dev =", dosis.dev, "; resp.dev =", resp.dev)
## dosis.dev = -0.4 -1.4 -1.4 0.6 2.6 ; resp.dev = -3 -2 -1 2 4
# Cálculo del coef. de covariación
Covar <- sum((dosis.dev)*(resp.dev))/(length(dosis)-1); cat("cov =", Covar)
## cov = 4.25
# cálculo de la covariación entre dosis y respuesta con cov(x,y)
cov(dosis,resp)
## [1] 4.25
El problema de usar la covarianza como medida de relación entre variables estriba en que depende de la escala de las medidas usadas. Es decir, la covarianza no es una medida estandarizada. Por tanto la covarianza no puede ser usada para comparar las relaciones entre variables medidas en diferentes unidades.
Para resolver el problema de dependencia de la escala o unidades de las mediciones (valores), necesitamos una unidad a la cual pueda convertirse cualquier medida. Esta unidad de medida libre de escala es la desviación estándar (s ó \sigma). Al igual que la varianza, mide la desviación promedio de los datos con respecto a la media aritmética por no ser otra cosa que la \sqrt{varianza} ó \sqrt{s^2}. Al dividir cualquier distancia de la media por la desviación estándar, obtendremos una distancia en unidades de desviación estándar.
Por tanto, para normalizar la covarianza la tenemos que dividir por la desviación estándar. Como la covarianza se calcula para dos variables cov(x,y), tenemos que calcular la desviación estándar para cada variable, multiplicándolas entre ellas, es decir:
\displaystyle \text{Coef. de correlación de Pearson} (r) = \frac{cov(x,y)} {s_xs_y} =\frac{\sum(x_i-\bar{x})(yi-\bar{y})} {(N-1)s_xs_y}\\
# uso básico de la función cor()
cor(dosis,resp)
## [1] 0.8711651
# comprobamos el resultado usando la fórmula de r indicada arriba
cov(dosis,resp)/(sd(resp)*sd(dosis))
## [1] 0.8711651
Permiten evaluar la correlación entre dos variables (Var.1 y Var.2) considerando el efecto (varianza) de una tercera (Var.3) o más variables.
Eliminando la varianza compartida por las variables de interés con la o las variables auxiliares, obtenemos una medida de r que refleja los efectos de las variables de interés primario.
En R podemos hacer análisis de correlación parcial usando la función pcor() del paquete ggm. Veremos en la prática el uso de las funciones ggm::pcor() y $ggm::cpor.test().
El coeficiente de correlación \tau de Kendall es no paramétrico, es decir, se puede usar cuando se viola el supesto de distribución normal de las variables a comparar. La correlación \tau de Kendall es particularmente adecuada cuando tenemos un set de datos pequeño con muchos valores en el mismo rango o clase. Se puede usar por ejemplo con datos categóricos codificados binariamene (0,1). Estudios estadísticos han demostrado que el coeficiente de correlación \tau de Kendall es un mejor estimador de la correlación en la población que el coeficiente de correlación no paramétrico de Spearman \rho, por lo que se recomienda usar \tau para análisis de datos no paramétricos. En R se puede estimar la correlación \tau o \rho cambiando el valor del argumento method=“kendall” o method=“spearman” de la función cor, en la que por defecto method=“pearson”. Por ejemplo: cor(x,y, method="kendall")
El coeficiente de correlación elevado al cuadrado es el coeficiente de determinación, R^2, que mide la cantidad de variación en una variable que es compartida por otra. Vimos en el ejemplo anterior que la r para cor(dosis,resp) era de 0.8711651, y por tanto R^2 = 0.7589286. Por tanto podemos decir que la respuesta comparte un ~76% de la variación mostrada por la dosis. Tengan en cuenta de nuevo que compartir variabilidad no implica necesariamente causalidad.
# Cálculo del coeficiente de determinación, expresado como porcentaje, de la correlación
# entre dosis y respuesta.
cat("R^2(dosis,resp) =", round( cor(dosis,resp)^2 * 100, 1), "%.")
## R^2(dosis,resp) = 75.9 %.
Se trata de probar la hipótesis de que r\neq0, es decir, buscamos rechazar la H_0: r = 0.
Tenemos dos maneras de retar la H_0: i) usando z-scores; ii) mediante estadístico t.
Los z-scores son útiles ya que conocemos la probabilidad de ocurrencia de un valor de z determinado, siempre y cuando la distribución de la que proviene sea normal. Dado que es sabido que r tiene una distribución muestral no normal, tenemos que hacer una transformación de Fisher para normalizarla:
\displaystyle z_r = \frac{1}{2}log_e\left(\frac{1+r}{1-r}\right)\\
La z_r resultante tiene un error estándar de:
\displaystyle SE_{z_r} = \frac{1}{\sqrt{N-3}}
# el valor de r previamente calculado
r <- round(cor(dosis,resp), 2) # .87
# Cálculo del z-score para r
Zr <- 0.5*(log((1+r)/(1-r)))
cat("z-score para r (Zr): ", Zr)
## z-score para r (Zr): 1.33308
# Cálculo del error estándar de zr
SEzr <- 1/sqrt(5-3)
cat("error estándar de zr (SEzr):", SEzr)
## error estándar de zr (SEzr): 0.7071068
Ahora podemos transformar esta r ajustada a un z-score, tal y como vimos anteriormente para los scores crudos. Recuerden que para calcular un z-score que represente el tamaño de la correlación con respecto a un valor particular, simplemente calculamos el z-score contra dicho valor usando el SE_{z_r} asociado. Este valor generalmente va a ser 0, ya que queremos probar que H_1 \neq H_0, es decir, trataremos de rechazar la H_0: r = 0. Por tanto \displaystyle z = \frac{z_r}{SE_{z_r}}
z <- Zr/SEzr
cat("valor de z: ", z, "## ¿Será significativo?")
## valor de z: 1.885259 ## ¿Será significativo?
pvalue1sided = pnorm(-abs(z))
cat("valor p de una cola: ", pvalue1sided)
## valor p de una cola: 0.02969742
pvalue2sided <- 2*pnorm(-abs(z))
cat("valor p de dos colas: ", pvalue2sided, "## <<< Generalmente usamos este caso")
## valor p de dos colas: 0.05939484 ## <<< Generalmente usamos este caso
Pueden usar la función convert.z.score() para convertir z-scores a p-values, mostrada abajo.
# Vean cómo se importa código de en un archivo almacenado en el disco local
source("./code/func_convert.z.score.R")
# con este comando podemos imprimir a STDOUT (consola) el contenido del archivo guardado
# en disco
cat(readLines('./code/func_convert.z.score.R'), sep = '\n')
## # función para convertir z-scores a p-values, tomada de https://www.biostars.org/p/17227/
## convert.z.score<-function(z, one.sided=NULL) {
## if(is.null(one.sided)) {
## pval = pnorm(-abs(z));
## pval = 2 * pval
## } else if(one.sided=="-") {
## pval = pnorm(z);
## } else {
## pval = pnorm(-z);
## }
## return(pval);
## }
# Con estas líneas llamamos a la función que hemos importado con source
pval.2s <- convert.z.score(z)
pval.1s <- convert.z.score(z, 1)
# imprimimos el contenido de las variables que almacenan el resultado devuelto
# por la función
cat("2-sided pval: ", pval.2s, "| 1-sided pval: ", pval.1s)
## 2-sided pval: 0.05939484 | 1-sided pval: 0.02969742
En R el test de significancia de r está implementado en la función cor.test(), basado en el estadístico-t. con N-2 grados de libertad, que pueden obtenerse directamente de r:
\displaystyle t_r = \frac{r \sqrt{(N-2)}}{\sqrt{1-r^2}}\\
#>>> Cálculo a mano de la significancia de r
# Cálculo de r
r <- cor(dosis,resp)
# Cálculo del estadístico-t
tr <- r*(sqrt((5-2)))/sqrt((1-r**2))
cat("valor del estadístico-t: ", tr)
## valor del estadístico-t: 3.073181
# cálculo de la p del estadístico
ptr <- 2*pt(tr, 3, lower.tail = FALSE)
cat("valor de la p para el estadístico-t: ", ptr)
## valor de la p para el estadístico-t: 0.05442624
#>>> Cálculo automático con la función de R cor.test()
(cor.test(dosis, resp))
##
## Pearson's product-moment correlation
##
## data: dosis and resp
## t = 3.0732, df = 3, p-value = 0.05443
## alternative hypothesis: true correlation is not equal to 0
## 95 percent confidence interval:
## -0.0479747 0.9914236
## sample estimates:
## cor
## 0.8711651
El análisis de potencia es un aspecto importante del diseño experimental. Nos permite determinar el tamaño muestral (la famosa n) requerido para detectar un efecto de un determinado tamaño con un grado determinado de confianza. De modo complementario, tambíen nos permite determinar la probabilidad de detectar un efecto de un tamaño determinado, dados un nivel de confiaza y tamaño de muestra predeterminados. Así por ejemplo, si el nivel de confianza o estima del tamaño del efecto no son satisfactorios para un n dada, lo único aconsejable es incrementar la n o abandonar el experimento.
Las siguientes cuatro magnitudes están íntimamente relacionadas:
tamaño muestal (número de observaciones)
tamaño del efecto (medida de la fuerza de un fenómeno; la magnitud del estadístico, r, t, chi^2 …) wikipedia
nivel de significancia = P(error Tipo I) = probabilidad de observar un effecto inexistente (usualmente \alpha = .05)
potencia = 1 - P(error Tipo II) = probabilidad de observar un effecto real (un valor frecuentemente usado es 0.8)
Dadas cualesquiera tres, podemos determinar la cuarta magnitud.
Recordemos los tipos de error: - Error de tipo I: ocurre cuando estimamos que existe un efecto en la población, cuando en realidad no hay tal. - Error de tipo II: ocurre cuando estimamos que no existe un efecto en la población, cuando en realidad sí lo hay.
Los coeficientes de correlación son un ejemplo clásico de tamaños del efecto, por tanto podemos interpretar r sin la necesidad de valores p, particularmente debido a que los valores p están relacionados con el tamaño de la muestra. Hay muchos estadísticos que recomiendan no obsesionarse con los famosos valores p para coeficientes de correlación, o coeficientes de regresión, ya que ambos son en sí estimadores de tamaños del efecto.
De lo explicado arriba debe quedar claro que el análisis de correlación sólo debe aplicarse entre pares de variables con relación lineal entre ellas. Es por tanto importante siempre graficar los datos para visualizar el tipo de relaciones entre las variables y detectar la presencia de valores atípicos o aberrantes (“outliers”).
El cuarteto de Anscombe comprende cuatro conjuntos de datos que tienen las mismas propiedades estadísticas (medias y varianzas), presentando los mismos valores de correlación entre pares de variables, con el mismo ajuste lineal (recta de regresión), pero que son marcadamente distintas al inspeccionarlas gráficamente.
Cada conjunto consiste de once puntos (x, y) y fueron construidos por el estadístico F. J. Anscombe. El cuarteto es una demostración de la importancia de visualizar gráficamente un conjunto de datos antes de someterlos a análisis estadísticos.
R trae el set de datos de Anscombe en el paquete datasets. Exploremos sus características estadísticas, grafiquemos las relaciones entre los pares de variables x1-y1, x2-y2, x3-y3, x4-y4 y discutamos los resultados.
Nota: este código puede ser un poco difícil de entender ya que contiene un bucle for y otros detalles sintácticos que no hemos visto en el curso. Muestro el código para los interesados en ejemplos para aprender estos elementos esenciales del lenguaje. Pero lo importante no es el código, sino las gráficas y análisis estadísticos resultantes, que discutiremos en la siguiente sección.
# visualizemos el conjunto de datos de Anscombe
# recuerda: str(anscombe) nos muestra la estructura del objeto
anscombe
## x1 x2 x3 x4 y1 y2 y3 y4
## 1 10 10 10 8 8.04 9.14 7.46 6.58
## 2 8 8 8 8 6.95 8.14 6.77 5.76
## 3 13 13 13 8 7.58 8.74 12.74 7.71
## 4 9 9 9 8 8.81 8.77 7.11 8.84
## 5 11 11 11 8 8.33 9.26 7.81 8.47
## 6 14 14 14 8 9.96 8.10 8.84 7.04
## 7 6 6 6 8 7.24 6.13 6.08 5.25
## 8 4 4 4 19 4.26 3.10 5.39 12.50
## 9 12 12 12 8 10.84 9.13 8.15 5.56
## 10 7 7 7 8 4.82 7.26 6.42 7.91
## 11 5 5 5 8 5.68 4.74 5.73 6.89
summary(anscombe)
## x1 x2 x3 x4
## Min. : 4.0 Min. : 4.0 Min. : 4.0 Min. : 8
## 1st Qu.: 6.5 1st Qu.: 6.5 1st Qu.: 6.5 1st Qu.: 8
## Median : 9.0 Median : 9.0 Median : 9.0 Median : 8
## Mean : 9.0 Mean : 9.0 Mean : 9.0 Mean : 9
## 3rd Qu.:11.5 3rd Qu.:11.5 3rd Qu.:11.5 3rd Qu.: 8
## Max. :14.0 Max. :14.0 Max. :14.0 Max. :19
## y1 y2 y3 y4
## Min. : 4.260 Min. :3.100 Min. : 5.39 Min. : 5.250
## 1st Qu.: 6.315 1st Qu.:6.695 1st Qu.: 6.25 1st Qu.: 6.170
## Median : 7.580 Median :8.140 Median : 7.11 Median : 7.040
## Mean : 7.501 Mean :7.501 Mean : 7.50 Mean : 7.501
## 3rd Qu.: 8.570 3rd Qu.:8.950 3rd Qu.: 7.98 3rd Qu.: 8.190
## Max. :10.840 Max. :9.260 Max. :12.74 Max. :12.500
# calculemos las medias y varianza de cada columna
# Noten el uso de la función sapply
sapply(anscombe, mean)
## x1 x2 x3 x4 y1 y2 y3 y4
## 9.000000 9.000000 9.000000 9.000000 7.500909 7.500909 7.500000 7.500909
sapply(anscombe, var)
## x1 x2 x3 x4 y1 y2 y3
## 11.000000 11.000000 11.000000 11.000000 4.127269 4.127629 4.122620
## y4
## 4.123249
# veamos ahora las correlaciones entre las viables x1-y1, x2-y2 ...
cor(anscombe[,1:4], anscombe[,5:8])
## y1 y2 y3 y4
## x1 0.8164205 0.8162365 0.8162867 -0.3140467
## x2 0.8164205 0.8162365 0.8162867 -0.3140467
## x3 0.8164205 0.8162365 0.8162867 -0.3140467
## x4 -0.5290927 -0.7184365 -0.3446610 0.8165214
# de la matriz anterior realmente necesitamos sólo su diagonal
diag(cor(anscombe[,1:4], anscombe[,5:8]))
## [1] 0.8164205 0.8162365 0.8162867 0.8165214
# Grafiquemos las relaciones entre las virables x1-y1, x2-y2 ...
# El objetivo del código es:
# 1) mediante par(mfrow=c(2,2), mar=c(6,4,1,1)) controlamos que las
# 4 gráficas queden en un solo display, como una matriz de 2x2.
# 2) Mediante dos bucles for anidados, obtenemos los índices para
# poder indexar el dataframe asncombe, atendiendo a los números
# de las columnas de las variables x,y que nos interesan: x=(1,2,3,4), y=(5,6,7,8).
# 3) Lo que sigue es llamar a plot para cada par x,y
# 4) para finalmente graficar la regresión lineal (explicado en el próximo tema).
# La información relevante (r y recta de regresión se imprime como texto sobre la gráfica)
# Las líneas correspondientes están comentadas en el código
# Si les parece complicada mi solución, vean la que propone la documentación de R
# tecleando help(anscombe); tiene detalles sintácticos muy interesantes
# par() controla los parámetros gráficos. guardamos en oldpar <- los ajustes originales
# de par()
oldpar <- par()
# plotea 4 gráficas en 2 filas y 2 columnas, dando márgenes entre ellas
par(mfrow=c(2,2), mar=c(4,4,1,1))
for(i in 1:4){ # 1,2,3,4
j <- i+4 # 5,6,7,8
# las siguientes variables capturan información que añadiremos al título de cada
# plot (..., main=h)
# función de redondeo, a 2 dígitos
r <- round(cor(anscombe[,i], anscombe[,j]), 2)
# pegamos diferentes elementos en una cadena
h <- paste("Anscombe plot,,", i, " r =", r, sep = ' ')
# ajustemos un modelo lineal lm() y capturemos sus coeficientes:
# corte eje ordenadas (y) y pendiente. Capturamos los valores y los
# pegamos en la fórmula general de la recta: y = a + bx.
# lm() ajusta un modelo lineal a los datos
fit <- lm(anscombe[,j] ~ anscombe[,i])
# con fit$coefficients[[1]] extraemos del objeto fit (una lista),
# el primer [[1]] y segundo [[2]] elemento almacenados en el vector
# llamado coefficients. Nótese el uso de [[]] para sacar elementos de una lista!!!
regr <- paste("y =", round(fit$coefficients[[1]], 2), "+",
round(fit$coefficients[[2]], 1), "x")
# estas líneas son para los "scatterplots" de los pares de variables
plot(anscombe[,i], anscombe[,j], main = h, xlab = "", ylab = "")
# y para graficar la recta de regresión
abline(lm(anscombe[,j] ~ anscombe[,i]), lty=2)
# con mtext() podemos escribir los coeficientes de la fórmula dentro del área
# de cada gráfica especificando el lado derecho (side=1), pegado a la derecha
# (adj = 1), y dos líneas abajo de la línea central (line = -2)
mtext(regr, side = 1, adj = 1, line = -2)
}
# re-establecemos los parámetros gráficos originales
par(oldpar)
El primer gráfico muestra lo que parece una relación lineal simple, correspondiente a dos variables correlacionadas que satisfacen el supuesto de normalidad. El segundo gráfico no está distribuido normalmente, aunque se observa relación entre los datos, esta no es lineal y el coeficiente de correlación de Pearson no es relevante ya que se viola claramente el supuesto de relación lineal. En la tercera gráfica la distribución es lineal pero con una línea de regresión diferente de la que se sale el dato extremo que influye lo suficiente como para alterar la línea de regresión y disminuir el coeficiente de correlación de 1 a 0.816. Por último, la cuarta gráfica (abajo a la derecha) es un ejemplo de muestra en la que un valor atípico es suficiente para producir un coeficiente de correlación alto incluso cuando la relación entre las dos variables no es lineal.
Vamos a usar las funciones del paquete base de R para análisis de correlación: cor y cor.test
Las opciones básicas son:
cor(x, use= , method= )
Donde:
x: Matrix or data frame.
use: Specifies the handling of missing data. The options are all.obs (assumes no missing data—missing data will produce an error), everything (any correlation involving a case with missing values will be set to missing), complete.obs (listwise deletion), and pairwise.complete.obs (pairwise deletion).
method: Specifies the type of correlation. The options are pearson, spearman, or kendall.
cor.test(x, y, alternative = , method = )
x, y: numeric vectors of data values. x and y must have the same length.
alternative: indicates the alternative hypothesis and must be one of “two.sided”, “greater” or “less”. You can specify just the initial letter. “greater” corresponds to positive association, “less” to negative association.
La lista completa de cada función la puedes ver con ?cor o help(cor.test)
Usaremos los paquetes car, corrplot, psych, ggm y pwr, que puedes instalar, junto con sus dependencias, con el comando: install.packages(c(“car”, corrplot“,”psych“,”ggm“,”pwr“), dep=TRUE)
Usaremos el set de datos states.x77 del paquete base datasets que R carga por defecto
Veamos cómo obtener información sobre este conjunto de datos:
# veamos la lista de datos pre-cargados en el ambiente
data()
help(package="datasets")
# más detalles con help
help("state")
# exploremos los detalles de states.x77
head(state.x77)
## Population Income Illiteracy Life Exp Murder HS Grad Frost
## Alabama 3615 3624 2.1 69.05 15.1 41.3 20
## Alaska 365 6315 1.5 69.31 11.3 66.7 152
## Arizona 2212 4530 1.8 70.55 7.8 58.1 15
## Arkansas 2110 3378 1.9 70.66 10.1 39.9 65
## California 21198 5114 1.1 71.71 10.3 62.6 20
## Colorado 2541 4884 0.7 72.06 6.8 63.9 166
## Area
## Alabama 50708
## Alaska 566432
## Arizona 113417
## Arkansas 51945
## California 156361
## Colorado 103766
colnames(state.x77)
## [1] "Population" "Income" "Illiteracy" "Life Exp" "Murder"
## [6] "HS Grad" "Frost" "Area"
# recureda estos comandos muy útiles para hacer la primera exploración de un dataframe
#dim(state.x77)
#str(state.x77)
#summary(state.x77)
# 1. Carguemos de una vez las librerías
library("corrplot") # corrplot::corrplot()
library("psych") # psych::corr.test
library("ggm") # ggm::pcor
library("car") # car::scatterplotMatrix
# 2. Vamos a reducir el dataframe original a las primeras 6 columnas para hacer menos
# voluminosa la salida
states<- state.x77[,1:6] # ojo: states es una matriz, no un dataframe!
class(states)
## [1] "matrix"
head(states); tail(states)
## Population Income Illiteracy Life Exp Murder HS Grad
## Alabama 3615 3624 2.1 69.05 15.1 41.3
## Alaska 365 6315 1.5 69.31 11.3 66.7
## Arizona 2212 4530 1.8 70.55 7.8 58.1
## Arkansas 2110 3378 1.9 70.66 10.1 39.9
## California 21198 5114 1.1 71.71 10.3 62.6
## Colorado 2541 4884 0.7 72.06 6.8 63.9
## Population Income Illiteracy Life Exp Murder HS Grad
## Vermont 472 3907 0.6 71.64 5.5 57.1
## Virginia 4981 4701 1.4 70.08 9.5 47.8
## Washington 3559 4864 0.6 71.72 4.3 63.5
## West Virginia 1799 3617 1.4 69.48 6.7 41.6
## Wisconsin 4589 4468 0.7 72.48 3.0 54.5
## Wyoming 376 4566 0.6 70.29 6.9 62.9
# 3. Hagamos un análisis de correlación de Pearson entre todos los pares de variables
# (columnas) numéricas.
# Cuáles son las correlaciones más fuertes que encuentras?
# Te parecen lógicas o verosímiles?
# use="everything", method="pearson" son los valores por defecto de estos parámetros.
cor(states)
## Population Income Illiteracy Life Exp Murder
## Population 1.00000000 0.2082276 0.1076224 -0.06805195 0.3436428
## Income 0.20822756 1.0000000 -0.4370752 0.34025534 -0.2300776
## Illiteracy 0.10762237 -0.4370752 1.0000000 -0.58847793 0.7029752
## Life Exp -0.06805195 0.3402553 -0.5884779 1.00000000 -0.7808458
## Murder 0.34364275 -0.2300776 0.7029752 -0.78084575 1.0000000
## HS Grad -0.09848975 0.6199323 -0.6571886 0.58221620 -0.4879710
## HS Grad
## Population -0.09848975
## Income 0.61993232
## Illiteracy -0.65718861
## Life Exp 0.58221620
## Murder -0.48797102
## HS Grad 1.00000000
# 3.1 visualización de las correlaciones entre múltiples variables en matrices,
# usando pairs()
pairs(~Population+Income+Illiteracy+Murder, data = states,
main ="Scatter plot matrix generated with pairs()")
# 3.2 visualización de las correlaciones entre múltiples variables en matrices,
# usando car()
car::scatterplotMatrix(~Population+Income+Illiteracy+Murder, data = states,
main ="Scatter plot matrix generated with car()",
spread=FALSE, smoother.args=list(lty=2))
# 3.3 Como vieron en 3, por defecto se producen matrices cuadradas, calculando r
# para todos los pares de variables numéricas. Pero a veces queremos focalizar el
# análisis a unas variables en particular, para estudiar su variación con respecto
# a otro conjunto de variables a la luz de las cuales queremos entender la variación
# de las primeras. Por ejemplo, ¿Cómo influyen "Population", "Income", "Illiteracy"
# y "HS Grad" en las variables de interés primario "Life Exp" y "Murder"?
x <- states[,c("Population", "Income", "Illiteracy", "HS Grad")]
y <- states[,c("Life Exp", "Murder")]
cor(x,y)
## Life Exp Murder
## Population -0.06805195 0.3436428
## Income 0.34025534 -0.2300776
## Illiteracy -0.58847793 0.7029752
## HS Grad 0.58221620 -0.4879710
# 4. Cálculo de la significancia de la correlación entre Income vs. Illiteracy,
# Income vs. HS Grad. Nótese que cor.test() sólo puede tomar vectores de
# valores x,y, no dataframes o matrices multicolumna
cor.test(states[,"Illiteracy"], states[,"Murder"])
##
## Pearson's product-moment correlation
##
## data: states[, "Illiteracy"] and states[, "Murder"]
## t = 6.8479, df = 48, p-value = 1.258e-08
## alternative hypothesis: true correlation is not equal to 0
## 95 percent confidence interval:
## 0.5279280 0.8207295
## sample estimates:
## cor
## 0.7029752
cor.test(states[,"Illiteracy"], states[,"HS Grad"])
##
## Pearson's product-moment correlation
##
## data: states[, "Illiteracy"] and states[, "HS Grad"]
## t = -6.0408, df = 48, p-value = 2.172e-07
## alternative hypothesis: true correlation is not equal to 0
## 95 percent confidence interval:
## -0.7908657 -0.4636561
## sample estimates:
## cor
## -0.6571886
# 4.1 Como vieron en 4, con la funcion cor.test() sólo podemos evaluar
# la significancia de correlaciones individuales (un par de variables cada vez).
# Si queremos evaluar múltiples pares de variables, necesitamos escribir
# una función que llame a cor.test() las veces que queramos o usar psych::corr.test()
?psych::corr.test # vean las opciones
psych::corr.test(states, use = "complete")
## Call:psych::corr.test(x = states, use = "complete")
## Correlation matrix
## Population Income Illiteracy Life Exp Murder HS Grad
## Population 1.00 0.21 0.11 -0.07 0.34 -0.10
## Income 0.21 1.00 -0.44 0.34 -0.23 0.62
## Illiteracy 0.11 -0.44 1.00 -0.59 0.70 -0.66
## Life Exp -0.07 0.34 -0.59 1.00 -0.78 0.58
## Murder 0.34 -0.23 0.70 -0.78 1.00 -0.49
## HS Grad -0.10 0.62 -0.66 0.58 -0.49 1.00
## Sample Size
## [1] 50
## Probability values (Entries above the diagonal are adjusted for multiple tests.)
## Population Income Illiteracy Life Exp Murder HS Grad
## Population 0.00 0.59 1.00 1.0 0.10 1
## Income 0.15 0.00 0.01 0.1 0.54 0
## Illiteracy 0.46 0.00 0.00 0.0 0.00 0
## Life Exp 0.64 0.02 0.00 0.0 0.00 0
## Murder 0.01 0.11 0.00 0.0 0.00 0
## HS Grad 0.50 0.00 0.00 0.0 0.00 0
##
## To see confidence intervals of the correlations, print with the short=FALSE option
# 5. visualizacion de matrices de correlación con corrplot
# Recuerden que para acceder a la ayuda del paquete pueden usar help() y vignette()
# help("corrplot")
# vignette("corrplot-intro")
# 5.1 - salida por defecto de corrplot
corrplot::corrplot(cor(states))
# 5.2 - hagamos la salida más legible e informativa: usemos elipses para indicar
# el grado y signo de la correlación, mostrando sólo la diagonal inferior,
# y ordenando los valores jerárquicamente
corrplot::corrplot(cor(states), method="ellipse", type="lower", order="hclust")
# 5.3 Similar como arriba, pero añadiendo una diagonal superior con los
# valores numéricos de r
corrplot::corrplot.mixed(cor(states), lower="ellipse", upper="number", order="hclust")
# 6. Por último podemos hacer un análisis de agrupamiento jerárquico de la matriz
# de correlación
fit.average <- hclust(dist(cor(state.x77[,2:6])), method = "average")
plot(fit.average, cex=.8, main = "average linkage clustering")
La correlación parcial se calcula entre dos variables cuantitativas, controlando para el efecto de una tercera o más variables cuantitativas adicionales.
La forma básica del comando es ggm::pcor(u, s), donde u es un vector numérico de tipo int, con los dos primeros números correspondiendo a los índices de las variables a ser correlacionadas, los demás números representando los índices de las variables condicionantes. s es la matriz de covarianza entre todas las variables incluidas en u. Es el uso de la covarianza para la matriz total lo que permite corregir la correlación entre las dos variables focales considerando el efecto condicionante de las demás variables auxiliares.
# 6 Hagamos un análisis de correlación parcial, es decir, considerando el efecto de las
# variables auxiliares. Compara e interpreta estos resultados con respecto a los
# obtenidos en el análisis de correlación de Pearson.
library("ggm")
colnames(states)
## [1] "Population" "Income" "Illiteracy" "Life Exp" "Murder"
## [6] "HS Grad"
# (c(1:length(colnames(states)))) # imprime los índices numéricos
# Population ~ Murder
ggm::pcor(c(1,5,2,3,6), cov(states))
## [1] 0.3462724
# Illiteracy ~ Murder
ggm::pcor(c(3,5,2,1,6), cov(states))
## [1] 0.5989741
# 7. Finalmente evaluemos la significancia de las correlaciones parciales
# ggm::pcor.test(r, q, n); r: coef. de correlación parcial calculado por ggm::pcor;
# q: número de variables condicionantes; n > 0: tamaño muestral
pcor1 <- ggm::pcor(c(1,5,2,3,6), cov(states))
pcor1
## [1] 0.3462724
ggm::pcor.test(pcor1, 3, length(row.names(states)))
## $tval
## [1] 2.476049
##
## $df
## [1] 45
##
## $pvalue
## [1] 0.01711252
Como ya se ha mencionado, los coeficientes de correlación representan tamaños de efecto, por tanto podemos interpretar r sin la necesidad de valores p, particularmente debido a que éstos están relacionados con el tamaño de la muestra. Por tanto no hay que obsesionarse con los famosos valores p, como recomiendan muchos estadísticos modernos (por ejemplo (???)). No obstante, puede ser intersante hacer un \text{test de potencia} de los datos para determinar si tenemos una muestra suficientemente grande como para que tenga poder estadístico. Podemos usar el paquete pwr de R para determinar la potencia estadística de nuestros datos para una amplia gama de tests estadísticos. Ilustraremos el uso de pwr para determinar r
pwr.r.test(n = , r = , sig.level = , power = )
donde:
n: es el tamaño muestal (no. de observaciones)
r: es el coeficiente de correlación lineal.
sig.level: es el nivel de significancia (proabilidad del error de Tipo I) # generalmente 0.05 power: potencia o fuerza del test (1 - probabilidad de error de Tipo II) # generalmente 0.8
Como vimos en 1.3.3, dados cualesquiera tres de estos valores, podremos calcular el cuarto, como mostraremos seguidamente.
Usamos el coef. de correlación poblacional com la medida de tamaño de efecto. Cohen sugiere que valores de r de 0.1, 0.3, y 0.5 representan tamaños de efecto pequeño. medio y grande, respectivamente.
# Análisis de potencia para r
# NOTA IMPORTANTE: exactamente uno de n, r, power, y sig.level tiene que ser = NULL
library("pwr")
# análisis de potencia de r: predicción de la potencia, dado un tamaño de muestra,
# valro de r y nivel de significancia
pwr.r.test(n = length(row.names(states)), r = pcor1, sig.level = .05, power = NULL)
##
## approximate correlation power calculation (arctangh transformation)
##
## n = 50
## r = 0.3462724
## sig.level = 0.05
## power = 0.70466
## alternative = two.sided
# análisis de potencia de r: predicción de p, dado un tamaño de muestra, valor de r
# y nivel de potencia de 0.8, que es un varlo estándar.
pwr.r.test(n = length(row.names(states)), r = pcor1, sig.level = NULL, power = .8)
##
## approximate correlation power calculation (arctangh transformation)
##
## n = 50
## r = 0.3462724
## sig.level = 0.09698378
## power = 0.8
## alternative = two.sided
# análisis de potencia de r: predección del tamaño mínimo de n, para alcanzar
# niveles dados valores de r y potencia
pwr.r.test(n = NULL, r = pcor1, sig.level = .05, power = .8)
##
## approximate correlation power calculation (arctangh transformation)
##
## n = 62.32216
## r = 0.3462724
## sig.level = 0.05
## power = 0.8
## alternative = two.sided
# Análisis de correlación no paramétrico sobre variables categóricas
# codificadas binariamente, usando la $\tau$ de Kendall.
# ... TODO
El ejercicio se va a hacer en base al conjunto de datos mtcars que distribuido en el paquete datasets de la instalación base de R. Responde de manera concisa y precisa a las siguientes preguntas, mostrando el código usado y la salida del mismo usando Rmarkdown y Rstudio, salvando la salida en un archivo html, que será el que subas al sistema moodle del curso, para su calificación.
Allaire, JJ, Joe Cheng, Yihui Xie, Jonathan McPherson, Winston Chang, Jeff Allen, Hadley Wickham, Aron Atkins, and Rob Hyndman. 2016. Rmarkdown: Dynamic Documents for R. https://CRAN.R-project.org/package=rmarkdown.
Boehmke, Bradley. 2016. Data Wrangling with R. 1st ed. Springer. http://www.springer.com/la/book/9783319455983.
Champely, Stephane. 2016. Pwr: Basic Functions for Power Analysis. https://CRAN.R-project.org/package=pwr.
Cotton, Richard. 2013. Learning R. 1st ed. O’Reilly.
Crawley, Michael J. 2012. The R book. 2nd ed. Wiley.
———. 2015. Statistics : an introduction using R. 2nd ed. Wiley.
Everitt, Bryan, and Torsten Hothorn. 2014. A handbook of statistical analyses using R. 3rd ed. Boca Raton: CRC Press. https://cran.r-project.org/web/packages/HSAUR/vignettes/Ch{\_}introduction{\_}to{\_}R.pdf.
Field, Andy P., Jeremy Miles, and Zoe. Field. 2012. Discovering statistics using R. 1st ed. London: Sage.
Fox, John, and Sanford Weisberg. 2016. Car: Companion to Applied Regression. https://CRAN.R-project.org/package=car.
Gandrud, Christopher. 2015. Reproducible research with R and RStudio. 2nd ed. Chapman & Hall. https://github.com/christophergandrud/Rep-Res-Book.
Grolemund, Garrett. 2014. Hands-on programming with R. O’Reilly.
Kabacoff, Robert. 2015. R in action : data analysis and graphics with R. 2nd ed. Manning. https://github.com/kabacoff/RiA2 http://www.statmethods.net/.
Lander, Jared P. 2014. R for everyone : advanced analytics and graphics. New York, N.Y.: Addison-Wesley.
MacFerlane, John. 2016. “Pandoc - a universal document converter.” http://pandoc.org/.
Marchetti, Giovanni M., Mathias Drton, and Kayvan Sadeghi. 2015. Ggm: Functions for Graphical Markov Models. https://CRAN.R-project.org/package=ggm.
Matloff, Norman S. 2011. The art of R programming : tour of statistical software design. No Starch Press. http://heather.cs.ucdavis.edu/{~}matloff/132/NSPpart.pdf.
Murrell, Paul. 2009. “R Graphics.” In Wiley Interdisciplinary Reviews: Computational Statistics, 1:216–20. doi:10.1002/wics.22.
R Core Team. 2016. R: A Language and Environment for Statistical Computing. Vienna, Austria: R Foundation for Statistical Computing. https://www.R-project.org/.
Revelle, William. 2016. Psych: Procedures for Psychological, Psychometric, and Personality Research. https://CRAN.R-project.org/package=psych.
RStudio Team. 2016. RStudio: Integrated Development Environment for R. Boston, MA: RStudio, Inc. http://www.rstudio.com/.
Teetor, Paul, and Michael Kosta. Loukides. 2011. R cookbook. O’Reilly. http://www.cookbook-r.com/.
Wei, Taiyun, and Viliam Simko. 2016. Corrplot: Visualization of a Correlation Matrix. https://CRAN.R-project.org/package=corrplot.
Wickham, Hadley. 2016. Ggplot2. 2nd ed. Use R! Cham: Springer International Publishing. doi:10.1007/978-3-319-24277-4.
Xie, Yihui. 2016. Knitr: A General-Purpose Package for Dynamic Report Generation in R. https://CRAN.R-project.org/package=knitr.